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En anglaisRÉSUMÉ
Parmi les techniques de traitement des échantillons avant analyse, l’extraction sur phase solide (Solid-Phase Extraction) est devenue la plus répandue. Très facile d’utilisation pour les fluides biologiques, directement applicable aux liquides et notamment à l’analyse des eaux, cette méthode d’extraction reste en pleine évolution ; les supports se diversifient, les phases sont de nature très variées et les formats se multiplient et la sélectivité de l’extraction ne cesse d’augmenter.
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Valérie PICHON : Maître de Conférences, Dr, HDR Laboratoire Environnement et Chimie analytique (LECA) École Supérieure de Physique et Chimie Industrielles (ESPCI)
INTRODUCTION
Malgré la mise en œuvre de techniques de séparation performantes associées à des modes de détection de plus en plus sensibles et spécifiques, l’efficacité de la procédure analytique est encore limitée par l’étape de préparation de l’échantillon. Il s’agit d’une étape importante puisque l’on estime que 30 % des erreurs commises au cours de l’analyse globale lui sont imputables et que l’analyste lui consacre 60 % de son temps. Les stratégies adoptées lors de cette étape sont diverses et dépendent de la nature du soluté, de la nature de l’échantillon et du niveau de concentration recherché.
Il apparaît cependant important de développer des méthodes rapides, fiables (ce qui implique la diminution du nombre d’étapes intermédiaires : transferts, évaporations, dérivations...), pouvant être facilement automatisées et qui permettent de limiter l’utilisation de solvants organiques, conformément à la législation en vigueur. Basées sur ces principes, des méthodes variées applicables à un type d’échantillon ou facilement adaptables à des échantillons d’origines variées sont apparues et ont montré un fort potentiel.
Il n’y a plus de doute sur le fait que l’extraction sur phase solide (SPE, Solid-Phase Extraction) soit devenue la technique la plus répandue de traitement des échantillons liquides avant analyse ; en témoigne le nombre de fournisseurs proposant actuellement des produits SPE (phases disponibles sous différents formats, robots...). Cette méthode d’extraction sur phase solide est de plus en plus mise en œuvre pour les échantillons liquides en raison de sa grande facilité d’utilisation, puisqu’elle est directement applicable pour l’analyse des eaux (l’étape de filtration étant souvent intégrée à l’étape d’extraction), ou nécessite un simple traitement préalable (dialyse, ultrafiltration), notamment pour les fluides biologiques.
Son émergence est particulièrement liée aux réglementations sur les solvants organiques, mais aussi au fait que l’extraction liquide-liquide, longtemps utilisée, ne peut être appliquée à l’extraction de composés polaires de l’eau, du fait de leur faible affinité pour ces solvants. Son évolution a été facilitée par la commercialisation de phases de natures très variées et dédiées à des composés et à des échantillons très différents, et soutenue par une évolution rapide des formats disponibles (cartouches de différentes capacités, disques, plaques à 96-puits) ainsi que des automates adaptés à ces différents formats.
Cette technique SPE tire sa richesse de la diversité des supports disponibles actuellement ou en cours de développement, comme les matériaux à empreinte moléculaire ou les immunoadsorbants, qui permettent d’augmenter la sélectivité de l’étape d’extraction et ainsi facilitent la détection des composés lors de l’analyse.
Dérivée de l’extraction liquide-solide, la microextraction sur fibres (Solid-Phase Micro-Extraction, SPME) conduit aussi à des résultats très prometteurs. Dans cette méthode, les composés organiques sont extraits par une fibre de silice enrobée d’un polymère puis directement transférés dans l’injecteur en chromatographie en phase gazeuse (CG), l’injection en chromatographie en phase liquide (CL) étant encore peu développée. C’est une méthode simple, rapide, sans solvant et qui ne nécessite qu’un petit volume d’échantillon. Elle est basée sur l’équilibre de partage de l’analyte à extraire entre l’échantillon et la fibre recouverte d’un polymère. D’autres techniques d’extraction non exhaustives basées sur ce principe sont actuellement en cours de développement.
Ce dossier a pour objectif de présenter les principes de base de ces méthodes et d’illustrer leur potentiel par des applications à différents domaines.
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3. Rendements d’extraction et analyse quantitative
Le rendement est défini par le rapport entre la quantité de soluté extraite et la quantité percolée. Ce rendement est en théorie de 100 %, si le volume percolé est inférieur au volume de fin de fixation Vf. De ce fait, le rendement d’un soluté dépend du volume percolé et du volume de fin de fixation de ce soluté, ces deux paramètres étant liés aux propriétés physico-chimiques du soluté (coefficient de partage n-octanol/eau (lg P), pKa, solubilité...) et à la nature de l’adsorbant choisi.
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Pour la méthode d’extraction en différé, la mesure des rendements est basée sur la comparaison du signal détecté (aire ou hauteur de pic) après injection de l’extrait dans le système chromatographique avec le signal obtenu par injection directe d’une quantité de solutés équivalente à un rendement de 100 % (en tenant compte des pertes en facteur d’enrichissement inhérentes au protocole de préconcentration choisi, notamment la proportion d’extrait injecté). Ainsi, pour procéder ensuite à la quantification des analytes, il sera important d’intégrer dans le calcul la valeur du rendement global qui tient compte, entre autres, du rendement d’extraction mais aussi des pertes en facteur d’enrichissement (injection d’une fraction de l’extrait, perte partielle à l’évaporation...).
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Pour la méthode d’extraction en ligne, la comparaison du signal détecté résultant de l’élution de la précolonne à une injection directe suppose la parfaite connaissance du volume de la boucle d’injection, ce qui est difficile compte tenu du fait que celle-ci est commercialisée avec une incertitude pouvant atteindre 15 à 20 %. Il est donc souhaitable, dans ce cas, pour quantifier des composés contenus dans un échantillon à analyser, de comparer le résultat de la préconcentration à un étalonnage réalisé par préconcentration d’un même volume d’eau pure dopée par des quantités variables des composés analysés.
Enfin, il est important de vérifier que des constituants de l’échantillon n’influent pas sur la rétention des composés ciblés, car des effets de matrices peuvent engendrer des variations de rendement. Un moyen permettant de contrôler ces effets consiste à faire un ajout dosé à l’échantillon...
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BIBLIOGRAPHIE
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