Présentation
En anglaisRÉSUMÉ
Les cellules d’insectes sont largement utilisées pour produire des protéines recombinantes matures et actives. Associées aux vecteurs baculovirus, elles sont particulièrement adaptées pour la production de vaccins recombinants, pour des applications vétérinaires ou chez l’homme. En raison de la nature binaire de ce système, le développement de procédés de production nécessite l’intégration et un réglage fin de paramètres liés d’une part au virus et, d’autre part, aux cellules.
Cet article présente les différents modules qui composent le système de production basé sur les cellules d’insecte et le baculovirus. Les faiblesses identifiées ainsi que les axes majeurs de développement de cette technologie sont également décrits.
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Insect cells are widely used to produce mature and active recombinant proteins. Associated with baculovirus vectors, they are particularly suitable for the production of recombinant vaccines for veterinary applications or humans. Due to the binary nature of this system, the development of production processes requires the integration and a fine adjustment of parameters relating firstly to the virus, and secondly to the cells.
This article presents the different modules that make up the production system based on insect cells and baculovirus. The weaknesses identified and the major development-axes of this technology are also described.
Auteur(s)
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Hassan CHAABIHI : Directeur Agate Bioservices, Bagard, France
INTRODUCTION
La recherche biopharmaceutique moderne et le développement de nouvelles solutions thérapeutiques s'appuient le plus souvent sur l'étude des gènes et des protéines pour lesquelles ils codent. L'avènement de technologies de séquençage de génomes entiers à haut débit et la disponibilité de la puissance de calcul nécessaire à l'exploitation des données générées ont considérablement renforcé le rôle du génie génétique et de la biologie moléculaire. C'est ainsi que les mécanismes fondamentaux de la vie – que sont la transcription de l'ADN, puis la traduction des ARN messagers – sont exploités dans une large panoplie de systèmes vivants pour synthétiser des protéines qui seront utilisées dans les programmes de développement pharmaceutique.
Que ce soit pour réaliser des tests de criblage in vitro de molécules chimiques, pour construire des modèles cellulaires exprimant tel ou tel récepteur, développer un anticorps monoclonal thérapeutique ou encore un vaccin recombinant, le recours à un système de production de protéines recombinantes est le plus souvent la règle.
Parmi ces systèmes, les cellules d'insecte occupent une place intermédiaire entre les bactéries (procaryotes) puis les eucaryotes unicellulaires (levures), d'une part, et, d'autre part, les cellules de mammifères supérieurs telles que les CHO (Chineese Hamster Ovary cells). La bactérie Escherichia coli a été le premier système de production développé pour la production d'une protéine thérapeutique, l'insuline humaine. Cet organisme, par sa simplicité d'utilisation, sa rapidité, ses rendements de production et son faible coût, est très souvent évalué en première intention. Cependant, l'absence de modifications protéiques post-traductionnelles importantes, comme les glycosylations, les maturations protéolytiques ou la formation de certains ponts disulfure, rend assez souvent indispensable le recours à des systèmes eucaryotes, et plus particulièrement quand l'ingénierie génétique ne permet pas de lever les obstacles.
À l'autre bout de la chaîne, les cellules de mammifères (CHO principalement) sont aujourd'hui le système de choix pour produire les protéines thérapeutiques complexes. Les anticorps monoclonaux, dont une trentaine sont approuvés et mis sur le marché, sont l'exemple par excellence de protéines multimériques complexes produites dans ces cellules.
Les cellules d'insecte sont très largement utilisées pour produire des protéines pour la recherche biopharmaceutique. Elles s'imposent comme une alternative très intéressante pour accomplir les modifications co- et post-traductionnelles complexes requises pour un grand nombre de protéines, notamment humaines. Grâce au vecteur baculovirus, elles sont rapides à mettre en œuvre et permettent le plus souvent d'obtenir des rendements de production importants (de 100 mg à 1 g/L). Ce système d'expression présente par ailleurs une sécurité biologique accrue. Les éléments qui y sont mis en œuvre ne présentent aucun risque pathogène ni pour les vertébrés ni pour les plantes.
Malgré quelques inconvénients qui freinent encore son développement à grande échelle pour la bioproduction pharmaceutique, le système baculovirus/cellules d'insecte semble avoir trouvé dans les vaccins un premier domaine de prédilection. En effet, plusieurs vaccins, humains ou vétérinaires, produits par ce système sont sur le marché. Des procédures robustes de culture et de fermentation des cellules d'insecte existent. Les développements au niveau des outils biologiques, des procédés et des équipements sont continus, ce qui va certainement lui assurer une part de plus en plus importante en bioproduction. Dans les domaines des vaccins en particulier, le champ est immense car un grand nombre de virus ou d'autres micro-organismes pathogènes ne disposent pas encore de solutions vaccinales satisfaisantes. Par ailleurs, la mobilité grandissante à l'échelle mondiale favorise la dissémination de pathogènes et augmente les risques épidémiques. La rapidité avec laquelle certains vaccins spécifiques peuvent être produits par ce système (8 à 10 semaines pour les virus influenza, par exemple) est un atout majeur.
En parallèle de sa rapide progression dans le domaine des vaccins, le baculovirus et les cellules d'insecte connaissent un développement important dans le domaine du transfert de gènes et de la thérapie génique. Le potentiel du vecteur baculovirus dans ce cadre est parfaitement validé sur plusieurs modèles animaux. Par ailleurs, son exploitation en tandem avec les cellules d'insecte pour produire des particules du virus adéno-associé (AAV) parfaitement aptes à la transgénèse lui ouvre de nouvelles perspectives dans la production pharmaceutique.
L'objectif du présent article est de fournir une vue large de la principale technologie de production de protéines dans les cellules d'insecte, tout en illustrant son positionnement de plus en plus fort dans le domaine des vaccins recombinants. D'un point de vue technique, les méthodes de construction de vecteurs et de culture des cellules sont décrites. Les paramètres qui permettent la mise en place et l'optimisation de procédés de bioproduction sont définis. Enfin, des axes importants de développements scientifiques et technologiques sont mis en perspective afin de souligner le potentiel de ce système.
le lecteur trouvera en fin d'article un glossaire des termes et expressions importants de l'article.
KEYWORDS
Baculovirus | insect cells | cell culture | Recombinant proteins
DOI (Digital Object Identifier)
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8. Glossaire – Définitions
ITR ; ITRs
Les ITR, pour Inverted Terminal Repeats, sont des séquences répétées et inversées qui se trouvent aux extrémités de certains génomes viraux. Dans le cas des AAV, ces séquences forment des structures en épingle à cheveux à chacune des extrémités de l'ADN viral monocaténaire. Elles sont impliquées dans la réplication du génome, dans son intégration au chromosome 19 des cellules hôtes, mais également dans l'encapsidation virale.
Mode perfusé en culture cellulaire ; perfused mode in cell culture
Mode qui consiste à soutirer du milieu de culture contenant des produits métabolisés et à le remplacer par du milieu neuf. Les cellules sont maintenues en place et le volume de la culture reste généralement le même durant le processus.
N-glycosylation ; N-glycosylation
Série de réactions mettant en jeu un grand nombre d'enzymes cellulaires qui permet de fixer une chaîne glucidique plus ou moins complexe sur des asparagines (asn) dans une séquence consensus du type asn-X-sérine/thréonine (X pouvant être n'importe quel acide aminé sauf la proline). Le processus de N-glycosylation débute dans le réticulum endoplasmique et se poursuit dans l'appareil de Golgi. Il ne concerne par conséquent que les protéines qui transitent par ces compartiments (protéines membranaires et sécrétées notamment) ou qui y sont naturellement localisées.
Nombre de passages ; passage number
La culture de cellules in vitro implique un entretien régulier afin de maintenir des conditions de croissance optimales. Arrivées à une certaine densité, les cultures doivent être diluées et transférées dans de nouveaux flacons en apportant du milieu neuf (repiquage). Le nombre de passages d'une lignée cellulaire correspond au nombre de repiquages subis depuis l'origine de la lignée.
Recombinaison homologue ; homologous recombination
Processus biologique complexe par lequel des enzymes provoquent des cassures suivies de ligations au niveau de deux séquences d'acides nucléiques identiques, aboutissant à un échange de matériel génétique.
Titrage viral ; viral titration
Le titrage consiste à infecter des cellules par des dilutions limites de virus pour calculer le nombre d'unités infectieuses par unité de volume de la suspension virale. Ces infections sont réalisées soit dans des boîtes...
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Glossaire – Définitions
BIBLIOGRAPHIE
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(1) - ABE (T.), MATSUURA (Y.) - Host innate immune responses induced by baculovirus in mammals. - Curr. Gene. Ther., 10, p. 226-231 (2010).
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(2) - AIRENNE (K.J.), HU (Y.C.), KOST (T.A.), SMITH (R.H.), KOTIN (R.M.), ONO (C.), MATSUURA (Y.), WANG (S.), YLÄ-HERTTUALA (S.) - Baculovirus : an insect-derived vector for diverse gene transfer applications. - Mol. Ther., 21, p. 739-749 (2013).
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(3) - AIRENNE (K.J.), MAKKONEN (K.E.), MÄHÖNEN (A.J.), YLÄ-HERTTUALA (S.) - In vivo application and tracking of baculovirus. - Curr. Gene. Ther., 10, p. 187-194 (2010).
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(4) - ALNEMRI (E.S.), ROBERTSON (N.M.), FERNANDES (T.F.), CROCE (C.M.), LITWACK (G.) - Overexpressed full-length human BCL2 extends the survival of baculovirus-infected Sf9 insect cells. - Proc. Natl. Acad. Sci., États-unis, 89, p. 7295-7299 (1992).
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(5) - AUMILLER (J.J.), HOLLISTER (J.R.), JARVIS (D.L.) - A transgenic lepidopteran insect cell line engineered to produce CMP-sialic acid and sialoglycoproteins. - Glycobiology, 13, p. 497-507 (2003).
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